“酶的提取方法”是藥物分析會涉及的內(nèi)容，為了幫助考生更好的復(fù)習(xí)，醫(yī)學(xué)教育網(wǎng)整理以下內(nèi)容，希望對廣大考生有幫助！

胞外酶可以直接進(jìn)行提取分離;胞內(nèi)游離存在的“離酶”以及與顆粒體(如細(xì)胞核、線粒體、微粒體、質(zhì)膜)結(jié)合的“結(jié)酶”都有一個(gè)破碎細(xì)胞過程，“結(jié)酶”還有一個(gè)轉(zhuǎn)變成水溶液的問題。因此對酶類的提取要采用多種方法，常用的細(xì)胞破碎法如下：

機(jī)械法：如絞碎、刨碎、勻漿、研磨、擠壓或超聲波等。研磨時(shí)還可加入細(xì)砂、石英粉、氧化鋁等以利細(xì)胞破碎。

化學(xué)法：用鹽、堿、表面活性劑、EDTA、丙酮和正丁醇等可使細(xì)胞破碎、顆粒體結(jié)構(gòu)解體，從而把酶釋放出來。例如常將胰臟用數(shù)倍量丙酮處理2——3次，制成丙酮粉供多種酶的提取用;用膽酸鹽處理膜結(jié)構(gòu)上的脂蛋白和“結(jié)酶”，使兩者形成復(fù)合物，并帶上靜電荷，由于電荷之間的排斥作用，使膜破裂，達(dá)到溶解。

酶解法：用組織自溶或用溶菌酶、脫氧核糖核酸酶、磷脂酶等降解細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)，然后再進(jìn)行提取。但應(yīng)知道組織自溶法對某些酶的提取是不利的，如胰蛋白是以酶原形式純化后再激活成胰蛋白酶的，若用自溶法提取，酶原已轉(zhuǎn)成酶，純化就很困難。而用純的工具酶降解法是無此缺點(diǎn)，但成本較高。

凍融法：采用反復(fù)冷凍與融化時(shí)由于細(xì)胞中形成了冰晶及剩余液體中鹽濃度的增高可以使細(xì)胞破裂。

酶的提取溶劑可以用水、一定濃度的乙醇、乙二醇、丁醇和稀鹽溶液、緩沖溶液等;也可以用稀堿或稀酸溶液，如用稀硫酸提取胰蛋白酶，用稀鹽酸提取胃蛋白酶。溶劑用量一般為原料重量的1——5倍。攪拌可加速提取，但轉(zhuǎn)速不宜太快，否則會產(chǎn)生泡沫而難以過濾或使酶變性。多數(shù)酶的提取要在50C以下操作，但有的酶在較高溫度下提取更好，如胃蛋白酶在450C提得收率較高，一般可在一5——+400C間適當(dāng)選擇。提取液的pH應(yīng)在酶的穩(wěn)定pH范圍內(nèi)，并應(yīng)遠(yuǎn)離其等電點(diǎn)的pH為宜，如蛋白酶選用pH2.5——3，0，胰蛋白酶和α一糜蛋白酶則用0.25 N硫酸提取。若在中性或堿性提取時(shí)，最常用的是0.15 mol/L氯化鈉、0.02——0.05mol/L磷酸緩沖液、0.02-0.05mol/L焦磷酸緩沖液。正丁醇的親脂性強(qiáng)，能透入酶的脂質(zhì)結(jié)合物中，又兼有親水性，有類似表面活性劑的作用，適用于提取“結(jié)酶”。

為了減少提取液體積，可用多段逆流提取或柱型抽提法。液渣分離可用過濾法(如板框壓濾、旋轉(zhuǎn)真空過濾)或離心法。過濾時(shí)可加硅藻土、紙漿等為助濾劑。離心時(shí)可加入氫氧化鋁凝膠、磷酸鈣凝膠等以除去懸浮的膠體物質(zhì)。

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